quinta-feira, 29 de maio de 2014

Contribuição ao diagnóstico morfológico da adiaspiromicose pulmonar


Contribution to morphologic diagnosis of pulmonary adiaspiromycosis

Vitorino Modesto dos Santos1 2, Marlene Antonia dos Reis1, Sheila Jorge Adad1, João Carlos Saldanha1 e Vicente de Paula Antunes Teixeira1


RESUMO: Adiaspiromicose é usualmente diagnosticada em tecido pulmonar corado por hematoxilina-eosina, ácido periódico Schiff e prata-metenamina. Os autores descrevem a morfologia do fungo corado pelo mucicarmim, picro-sírius e vermelho Congo, inclusive à luz polarizada. Tratando-se de diagnósticos duvidosos, essas técnicas poderiam facilitar na diferenciação entre Emmonsia parva var crescens e outros agentes. Palavras-chaves: Micoses pulmonares. Adiaspiromicose. Emmonsia parva varcrescens. Chrysosporium parvum var crescens.
ABSTRACT: The diagnosis of adiaspiromycosis is usually based on lung sections stained by hematoxylin-eosin, periodic acid Schiff and methenamine silver. Authors describe the fungus aspect examined by mucicarmin, picro-sirius and Congo red methods, including polarized light microscopy. In doubtful cases, these methods could contribute to histopathological diagnosis ofEmmonsia parva var crescensKey-words: Pulmonary mycosis. Adiaspiromycosis. Emmonsia parva var crescensChrysosporium parvum var crescens.


Adiaspiromicose (a = não + diaspeiros = disseminar, distribuir, dispersar, espalhar, difundir + mykez = fungo)12 significa ausência de multiplicação e de disseminação nos hospedeiros, embora o fungo tenha sido descrito nos seios paranasais, encéfalo e rim de paciente com leucemia15, no rádio de paciente com AIDS6 e em linfonodos traqueobrônquicos e mediastinais de cangambá2. Predomina em climas temperados, sendo freqüente em pulmões de roedores que cavam e vivem em tocas11. Animais de rapina eliminam o fungo nas fezes, contaminando o solo, onde se desenvolve e pode ser inalado. Nos pulmões de hospedeiros, cada adiaconídio representa um propágulo2 7 13 20.
A doença é causada por Emmonsia. parva var. crescens14 17 20 24 ou Chrysosporium parvum var. crescens13 26Embora persistam controvérsias4 9 14 24, segundo Ajello13 o fungo pertence à divisão: Eumycota; subdivisão: Deuteromycotina; classe:Hyphomycetes; gênero: Emmonsia; espécie: parva; variedade crescens. Estudos de biologia molecular relacionam Emmonsia ao gênero Ajellomyces, família Onygenaceae, a que pertencem fungos patogênicos como Blastomyces dermatitidis e Histoplasma capsulatum4 14 20 24.
Emmonsia é um fungo dimórfico cujos aleuroconídios, medindo 2-4µm19 26, transformam-se em esférulas multinucleadas de paredes espessas (adiaconídios) que crescem até 700µm3 7 8 13 19 22, provocando resposta inflamatória no sítio de infecção2. Há grande variabilidade no número, tamanho, intensidade de coloração e quantidade de citoplasma entre os fungos presentes nos granulomas7. Em cortes tangenciais podem ter aspecto sólido; mas, geralmente apresentam-se como estruturas anelares vazias, ou com pequenos glóbulos hialinos refrativos e finos grânulos basofílicos ao longo da parede interna, sem qualquer evidência de multiplicação2 7 26.
Cerca de metade dos casos relatados de adiaspiromicose humana ocorreram no Brasil9. Tem sido descrita sua associação com uso de imunossupressores, abscessos pulmonares, aspergilose, bronquiectasias, candidíase, coccidioidomicose, criptococose, doença pulmonar obstrutiva crônica, linfomas, leucemia, tuberculose e AIDS5 6 7 9 13 15. Além dos pulmões, E. parva foi descrita em prótese valvular cardíaca, lesões cutâneas e apendicite complicada18.
A gravidade das lesões pulmonares e o quadro clínico dependem do número de conídios inalados19 25, de enfermidades associadas, da antigenicidade do fungo2 e da resposta imune do hospedeiro. A concomitância de lesões pulmonares cavitárias coalescentes e supurativas (de semanas a poucos meses), com granulomas epitelióides e fibrose hialinizada (de vários meses a anos) sugere que a inoculação do fungo pode repetir-se em diferentes ocasiões18 22.
Para definição diagnóstica, utiliza-se a biópsia transbrônquica16 (fragmentos < 2mm) e o lavado broncoalveolar, métodos que nem sempre permitem definir a etiologia de pequenos nódulos ou infiltrados intersticiais. Nessa circunstância, preconiza-se22 a biópsia por videotoracoscopia, por ser menos invasiva, fornecer maiores fragmentos de tecido, com morbidade e mortalidade mínimas, tendo eficácia comparável à da toracotomia10. A adiaspiromicose localizada usualmente tem remissão espontânea; porém, drogas antifúngicas são utilizadas na forma pulmonar disseminada16 17 19 20 22 23 25 que pode evoluir com insuficiência respiratória grave4, inclusive causando o óbito18 21.
O diagnóstico é estabelecido observando-se adiaconídios em amostras de tecido pulmonar coradas por hematoxilina-eosina (HE), prata-metenamina (Grocott ou Gomori) e ácido periódico Schiff (PAS)2 26. Adiaconídios menores, mais jovens, coram-se mais intensamente. O aspecto da parede celular varia dependendo da coloração utilizada9 26. No HE (Figuras 1 e 2), apresentam membrana celular espessa (10-90µm) e bilaminar, constituída por uma área interna pouco corada, homogênea, vítrea, levemente basofílica, pouco refrativa, não birrefringente, circundada por uma zona externa larga, intensamente eosinofílica onde se notam fenestrações. A membrana mostra-se trilaminar quando corada pelo PAS (Figura 3) e é intensamente impregnada pela prata-metenamina (Figuras 4 e 5) que acentua a presença de fenestrações9 26.


Pelo mucicarmim (Figura 6A), as camadas interna e média da parede mostram-se discretamente positivas, indicando a presença de muco ácido e neutro, sem birrefringência à luz polarizada (Figura 6B). Semelhante ao que foi descrito com relação aParacoccidioides brasiliensis, empregando-se a técnica do picro-sirius1, a parede do adiaconídio mostra birrefringência de cor alaranjada à luz polarizada (Figuras 7A e 7B). Utilizando-se o vermelho Congo notam-se mais de três camadas na parede, com intensa birrefringência amarelada à luz polarizada (Figuras 8A e 8B). A microscopia com contraste de fase, revela com nitidez a estrutura trilaminar da parede, mesmo em cortes corados pela hematoxilina-eosina (Figuras 9A e 9B).


Na investigação diagnóstica de rotina não têm sido úteis as culturas, os testes cutâneos, nem a inoculação em animais de laboratório20. Embora menos sensível e específico que os exames micológicos, o estudo histopatológico permite comprovar a invasão dos tecidos pelo fungo. Na avaliação histopatológica, entretanto, constata-se grande variabilidade nas características dos adiaconídios descritos nos granulomas, incluindo número, forma, tamanho (2-700µm), estrutura da parede, quantidade de citoplasma, intensidade de coloração e aspecto à luz polarizada. Esse fato pode propiciar equívocos diagnósticos entre Emmonsia parva e outros agentes que em maior número e com maior freqüência acometem os pulmões, em especial quando estiverem associados a adiaconídios de menor tamanho.
Fatores que dificultam o diagnóstico de adiaspiromicose incluem o conhecimento muito limitado sobre a doença, a concomitância de infecção por outros fungos (Aspergyllus, Cândida, Coccidioides, Cryptococcus)7 9, infecções assintomáticas e manifestações clínicas inespecíficas, aspecto radiológico compatível com outras pneumopatias, falta de teste sorológico específico e possibilidade de reações cruzadas com outros fungos (Blastomyces, Coccidioides, Histoplasma, Paracoccidioides)11, cultura do fungo não disponível, amostras de tecido inadequadas para exame e possibilidade de cura espontânea na maioria dos casos. Com o processo inflamatório, os adiaconídios podem sofrer acentuadas modificações de forma e tamanho, simulando a presença de outros fungos (Blastomyces, Coccidioides, Curvularia, Rhinosporidium), helmintos (Strongyloides, Dirofilaria), grãos de pólen e partículas minerais ou vegetais inalados3 9 22 26 (Figura 10).
Após o primeiro relato de adiaspiromicose pulmonar em paciente do Hospital Escola da FMTM22 mais dois casos foram confirmados em nosso meio, sugerindo a possibilidade de que a real freqüência dessa infecção esteja sendo subestimada.

AGRADECIMENTOS
Os autores agradecem às técnicas Valéria Ramos e Jucélia Ribeiro Torres pela confecção dos preparados histológicos e à FUNEPU pelo apoio financeiro.

REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS
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1. Curso de Pós-graduação em Patologia; 2. Departamento de Clínica Médica da Faculdade de Medicina do Triângulo Mineiro (FMTM), Uberaba, MG. Apoio financeiro: Fundação de Ensino e Pesquisa de Uberaba (FUNEPU), Uberaba, MG. Endereço para correspondência: Prof. Vitorino Modesto dos Santos. Al. República 64, Recanto das Torres, 38057-020, Uberaba, MG. Fax: 55 34 318 5335. 

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